Вирусная диарея крупного рогатого скота — Bovine viral diarrhea

Одной из самых частых проблем, с которой встречаются владельцы домашних животных, является диарея.

Диарея – это частый мягкий или жидкий стул. Она может быть вызвана различными причинами, начиная от простого изменения питания и заканчивая достаточно серьезными заболеваниями. Диарея может начинаться внезапно, быть кратковременной или длительной. Один эпизод жидкого стула не вызывает никакой опасности для здоровья и жизни собаки или кота, но более длительная диарея может привести к обезвоживанию или служит признаком существования у животного серьезных проблем со здоровьем.

Причины диареи у домашних животных

Список причин, которые могут вызывать жидкий стул у котов и собак, достаточно длинный. Самые частые из них:

  • Паразитарные заболевания – наличие кишечных гельминтов может раздражать пищеварительный тракт животного, вызывая диарею.
  • Инфекции – диарея может быть вызвана вирусными или бактериальными инфекциями.
  • Изменения в рационе питания или употребление неподходящей пищи – эти причины также могут вызывать раздражение или травматизацию кишечника, приводя к возникновению диареи.
  • Стресс – как и у людей, у животных стресс и беспокойство могут привести к расстройству кишечника.
  • Воспалительные заболевания кишечника – как и люди, животные могут болеть колитом (воспаление толстой кишки) или энтеритом (воспаление тонкой кишки), симптомом которых является диарея.
  • Метаболические заболевания, включая патологию печени поджелудочной или щитовидной железы.
  • Злокачественные новообразования органов пищеварительного тракта.
  • Некоторые лекарственные средства или токсины – одной из частых причин диареи может быть побочное действие применяемых медикаментов (например, антибиотиков) или случайное употребление токсинов.
  • Аллергические реакции.
  • Проглатывание сторонних предметов – например, игрушки или полиэтиленового пакета.

Содержание

  • 1 Классификация и структура вирусов
  • 2 Эпидемиология
  • 3 Патогенез 3.1 Острая преходящая инфекция
  • 3.2 Внутриутробные инфекции
  • 3.3 Хронические инфекции
  • 4 Клинические признаки
      4.1 ИП животные
  • 4.2 Заболевание слизистой оболочки
  • 5 Диагностика
      5.1 Обнаружение вирусов или антигенов
  • 5.2 Обнаружение антител к BVD
  • 6 Искоренение и борьба
  • 7 Вакцинация
  • 8 Смотрите также
  • 9 Рекомендации
  • 10 внешняя ссылка
  • Виды диареи и ее симптомы

    Отказ от еды при диарее
    Иногда ветеринары выделяют два вида диареи – тонкокишечную и толстокишечную. Они имеют различные причины возникновения и симптомы.

    Например, тонкокишечная диарея приводит к обильному жидкому стулу с незначительным увеличением частоты дефекации (примерно 3-5 испражнений в день). Во время дефекации животное не напрягается. Питомцы с тонкокишечной диареей также могут иметь рвоту и терять вес, у них быстро развивается обезвоживание организма. Иногда в их кишечнике вырабатывается избыточное количество газа, что проявляется урчанием в животе.

    Толстокишечная диарея приводит к выделению небольших количеств жидкого кала, но с большой частотой дефекации (более 5 раз в день). Во время испражнения животное напрягается. Стул может содержать слизь и прожилки крови. Как правило, животное с толстокишечной диареей не рвет и не теряет вес, обезвоживание развивается медленно.

    Одна из главных опасностей диареи у животных – обезвоживание организма. Его симптомы:

    • Ухудшение аппетита.
    • Жажда.
    • Летаргия или сонливость.
    • Запавшие глаза.
    • Учащенное сердцебиение.
    • Сухой язык.
    • Снижение эластичности кожи.

    Нужно учитывать, что быстрее всего обезвоживание развивается у котят и щенков, пожилых животных, а также у домашних питомцев, имеющих небольшие размеры.

    Классификация и структура вирусов

    BVDV являются членами рода Пестивирус

    , принадлежащий семье
    Flaviviridae
    . Другие представители этого рода вызывают Пограничная болезнь (овца) и классическая чума свиней (свиньи), которые наносят значительный финансовый ущерб животноводческой отрасли.[8]

    Пестивирусы представляют собой небольшие, сферические, одноцепочечные вирусы с РНК-оболочкой диаметром от 40 до 60 нм.[9]

    Геном состоит из одной линейной одноцепочечной молекулы с положительным смыслом размером примерно 12,3 т.п.н.[10] Синтез РНК катализируется BVDV РНК-зависимая РНК-полимераза (RdRp). Этот RdRp может подвергаться переключению цепей матрицы, что позволяет выбирать копию РНК-РНК. рекомбинация во время элонгационного синтеза РНК.[11]

    Распознаются два генотипа BVDV на основании нуклеотидной последовательности 5’-нетранслируемой (UTR) области; БВДВ-1 и БВДВ-2.[12] Изоляты BVDV-1 были сгруппированы в 16 подтипов (a –p), а BVDV-2 в настоящее время сгруппированы в 3 подтипа (a — c).[13]

    Штаммы BVDV можно далее разделить на отдельные биотипы (цитопатические или нецитопатические) в соответствии с их воздействием на культуру тканевых клеток; цитопатические (cp) биотипы, образованные в результате мутации нецитопатических (ncp) биотипов, вызывают апоптоз в культивируемых клетках.[14] Вирусы Ncp могут вызывать стойкую инфекцию в клетках и иметь интактный белок NS2 / 3. В вирусах ЦП белок NS2 / 3 либо расщепляется на NS2 и NS3, либо происходит дупликация вирусной РНК, содержащей дополнительный участок NS3.[15] Большинство инфекций BVDV в полевых условиях вызывается биотипом ncp.[1]

    Лечение и диагностика диареи у домашних животных

    С большинством случаев диареи у котов и собак можно справиться в домашних условиях. Если у животного нет признаков тяжелого обезвоживания, оно в целом выглядит здоровым и его поведение нормально, рекомендуется в течение 12-24 часов не давать ему никакой пищи. В это же время следует обеспечить питомцу обильное питье.

    Узи при поносе у животных
    Через 12-24 часа можно начинать кормить животное, давая ему в небольших порциях легко усваиваемую нежирную пищу – например, отваренную куриную грудку и рис. Если диарея не повторяется, домашнего питомца можно медленно переводить на его обычный рацион питания.

    Если диарея длится более 2 дней или у животного появились признаки тяжелого обезвоживания, необходимо обратиться к ветеринару, который назначит лечение в зависимости от причины заболевания. Оно может включать:

    • Постоянное изменение питания.
    • Инфузионная терапия для поддержания водно-электролитного баланса.
    • Антигельминтные препараты при паразитарных инвазиях.
    • Антибактериальные средства при бактериальных инфекциях.
    • Пробиотики и ферменты.
    • Противовоспалительные препараты.
    • Хирургические вмешательства при онкологических заболеваниях и сторонних телах в пищеварительном тракте.

    На прием в клинику лучше приводить голодного питомца (период после последнего кормления должен составлять 6-8 часов), так как в большинстве случаев необходимо будет проведение анализов крови и УЗИ органов брюшной полости. Так же в некоторых случаях проводятся дополнительные лабораторные исследования на паразитарные или инфекционные заболевания, обычное рентгенологическое исследование или рентгенологического исследование с барием (в этом случае вводится контрастное вещество для подкрашивания кишечника и наблюдения за прохождением бария по кишечнику). Так же иногда может понадобиться колоноскопия или гастроскопия с забором материала слизистой на гистологическое исследование.

    Помните, что в большинстве случаев причины диареи можно вылечить. Главное – вовремя начать следить за состоянием своего питомца и в случае осложнений обратиться к врачу.

    Вирусные заболевания крупного рогатого скота

    Представленные в статье материалы любезно предоставлены Яном Мускенсом, доктором ветеринарных наук из компании GD (Нидерланды). Читатель сможет получить информацию не только по данной теме, но и узнать о том, какие программы по борьбе с вирусными заболеваниями КРС разработаны в Нидерландах.

    Вирусная диарея (ВД)

    Примечательна, если можно так сказать, тем, что клинические признаки отсутствуют или могут быть ассоциированы с иными причинами: повышенная температура, диарея, снижение надоев, аборт на любом месяце стельности (чаще на втором триместре), возврат к эструсу, мертворождения (иногда резорбция или мумификация плода), снижение резистентности и восприимчивость к другим заболеваниям. О том, что в стаде есть больные животные, в том числе хронически инфицированные (далее PI), может свидетельствовать стабильно высокий уровень соматических клеток в молоке.

    Инфицированные ВД животные непрерывно выделяют огромное количество вирусов со слюной, фекалиями, а также глазными, носовыми и вагинальными истечениями. Заражению подвержены как стельные, так и не стельные коровы, а также молодняк. Животные-носители не производят, за редким исключением, антитела. Но в ряде случаев отмечалось, что уже через 10 суток инфицированные животные обладали антителами и «новоприбывшие» вирусы ВД у них не вызывали. Тем не менее, PI-коровы способны осеменяться и приносить телят. На 30-120 сутки стельности происходит заражение плода, и, если аборт не случается, рождаются хронически больные телята. По статистике, только у половины из них проявляются ярко выраженные клинические признаки вирусной диареи. Типичные PI-телята имеют низкую резистентность, устойчивую диарею, что неизбежно влечет за собой проблемы с сохранностью и получением плановых привесов. У новорожденных телят часто отмечаются аномалии, связанные с нарушениями деятельности нервной системы и головного мозга, в т.ч. гидроцефалия.

    Лечить животных-носителей бесполезно, никакие вакцины здесь не помогут. Необходима регулярная проверка всего поголовья, как коров, так и молодняка. Анализ основывается на определении вируса ВД, а не антител. Проводится тест крови у телят в возрасте 1 мес. и коров, а также анализ сборного молока от лактирующих коров. Животные-носители удаляются из стада.

    В Нидерландах с 1998 года действует добровольная программа для фермеров, позволяющая бесплатно проводить необходимые анализы и получать по их результатам сертификаты. С 2004 года внедрено экспресс-сканирование для исследования конкретных случаев, – обычно это множественные аборты, регистрирующиеся как на отдельной ферме, так и сразу на нескольких фермах в определенном районе. В 2006 году введено в практику хозяйств исследование сборного молока, что обеспечивает более качественный мониторинг ситуации, связанной с распространением ВД в стране.

    В Нидерландах владельцам настоятельно рекомендуют не продавать PI-животных. Если купленный скот оказался носителем ВД, покупка расторгается, а недобросовестный продавец, который был в курсе, что его скот инфицирован, но скрыл данный факт, – обязан оплатить все убытки покупателю. Вакцинация производится только для предотвращения появления в стаде животных-носителей. Телок вакцинируют до достижения ими возраста полугода, а затем повторно перед осеменением. Важно помнить, что так называемые «живые вакцины» не применяются для нетелей и стельных коров.

    Метод иммуноферментного анализа крови или биологических образцов от забитых (павших) коров или телят является основным. Для подтверждения статуса «чистой фермы» в течение 10 месяцев производится проверка на ВД всех телят в возрасте 1 мес. Если будет выявлен хоть один теленок-носитель, период тестирования пролонгируется еще на 10 месяцев. Либо дважды в год осуществляют проверку крови, взятой от 5-ти телок в возрасте 8-12 мес. на предмет наличия антител. Стадо считается «чистым», если по результатам тестов ни одна из пяти или всего одна телка оказалась серопозитивной. Если серопозитивных 2 телки – проводят их повторное тестирование, а также 5-ти других их сверстниц на наличие антител. Если серопозитивными оказались от 3 до 5 телок, стадо теряет статус «чистого», после чего производят проверку всего молодняка в возрасте от 1 до 16 мес.

    Проверка сборного молока на «вирусную чистоту» (ПЦР) и антитела также регулярно осуществляется, хотя данный метод подходит больше для Нидерландов, поскольку предполагает, что количество дойных коров в стаде не превышает 300 голов. Если образцы сборного молока «позитивные», то это значит, что в стаде порядка 30% коров серопозитивны. На основании полученных данных проводится тестирование образцов крови от всех животных.

    Экспресс-сканирование включает в себя проверку сборного молока на вирус и антитела, а также анализ индивидуальных образцов крови от 5-ти телок в возрасте 8-12 мес., также проводятся серологические исследования образцов крови от 5-ти коров, отелившихся в предыдущем календарном году (т.е. коров в возрасте 2,5 лет). Если в обеих группах, как коров, так и телок, результаты анализов позитивны – животные-носители присутствуют в стаде или присутствовали недавно; рекомендуется проверить все стадо на наличие ВД. Если коровы серопозитивны, а телки серонегативны, то значит, что животные-носители присутствовали в стаде, но были выбракованы (пали) за последние полгода-год, рекомендуется проверить всех телят в возрасте 1 мес. для скорейшего выявления вирусоносителей. Коровы серонегативны, а телки серопозитивны, – довольно редкое сочетание. И коровы и телки серонегативны – циркуляции вируса в стаде не было последние 3 года.

    Таблица 1. Выбор ИРТ-стратегии.

    Результаты теста по сборному молоку Вероятность Готовность к забору крови и выбраковке Рекомендации
    Нет антител Заражено <10% Нет, но необходимо наблюдение Сертификация согласно результатам теста по сборному молоку
    Да Сертификация по результатам анализа крови
    Нет Наблюдение за сборным молоком после вакцинации
    Антитела Заражено >10% Вакцинация

    Инфекционный ринотрахеит (вирус герпеса коров)

    Как и в случае с вирусной диареей, инфекционный ринотрахеит (далее ИРТ) поражает скот всех возрастов. Локализуется вирус в нервных клетках. ИРТ опасен тем, что после заболевания животные остаются вирусоносителями на всю жизнь. При стрессах различной этиологии вирус может активизироваться и начать стремительное распространение в стаде, где ранее имелись лишь отдельные особи с ярко выраженными клиническими признаками этого заболевания, либо их вообще не было.

    Характерно, что клинические признаки, как таковые, могут вообще отсутствовать или проявляться весьма умеренно. Только если заболевание переходит в тяжелую форму, регистрируются: повышенная температура, снижение продуктивности, респираторные заболевания, аборты на всех стадиях (чаще после 4-го мес. стельности), многократные и безрезультатные осеменения, низкая резистентность, даже гибель животных. Лечение животных-носителей не проводится.

    Причиной вспышек ИРТ в стаде может быть как внедрение вируса (покупка нового скота, контакты скота с соседским на пастбище или на выставке, занос вируса посетителями фермы), так и возобновление активности вируса, уже имеющегося в стаде. Экономические потери – снижение надоев, аборты, бесплодие коров, отсутствие продаж племенного молодняка, возросшие затраты на вакцинацию – поистине огромны и уже довели многих фермеров Евросоюза до банкротства.

    В Нидерландах специальной программы по борьбе с ИРТ не существует, хотя в свое время была инициирована работа по ее созданию, но приостановлена примерно 10 лет назад. В настоящее время, учитывая все возрастающий экспорт племенного скота, нидерландские фермеры в добровольном порядке осуществляют диагностику поголовья.

    Практикуются следующие методы диагностики: прямая – на наличие вируса; косвенная – на наличие антител. Золотым правилом косвенной диагностики является принцип: если есть антитела, значит есть вирус. В Нидерландах получили распространение тесты на гликопротеин Е (гЕ) и В (гВ), «датский иммуноферментный анализ», а также ПЦР назальных мазков. Тест гЕ более чувствителен, нежели гВ, но на проведение реакции требуется больше времени, порядка 3-4 недель.

    В случае, если у коровы или телки регистрируются обильные носовые истечения, производится ПЦР назальных мазков, а также двойной гЕ-серологический анализ с интервалом 3 недели.

    В образцах сборного молока, а иногда от конкретных коров, определяются гЕ-антитела.

    На основании полученной информации производится сертификация, и ферма считается «чистой». Этот статус налагает на владельца скота требования: проверять сборное молоко раз в месяц, либо проводить выборочный анализ крови коров дважды в год с интервалом 4-7 мес. и как минимум 3-х телок старше года. Кроме того, весь купленный скот у фермеров, не имеющих соответствующего сертификата, по прибытии на ферму,в обязательном порядке должен находиться на карантине до тех пор, пока серологические исследования взятых образцов крови не будут завершены.

    В Нидерландах используется только гЕ-негативная вакцина, вирус может быть «живой» или инактивированный. Внутримышечно вакцинируют телок по достижении ими возраста 6-7 мес., и далее – ежегодно. Однако на стельных коровах (особенно после 5-го мес. стельности) «живые» вакцины не применяются, а только инактивированные. Притом, инактивированная вакцина вводится дважды, с интервалом 14-28 суток. Интраназальные вакцины способны обеспечить, так называемый, «быстрый иммунитет», и могут использоваться для коров, как стельных, так и не стельных, а также телок.

    Неоспора (Neosporacaninum)

    Относится к протозойным заболеваниям, которое является основной причиной абортов вирусного происхождения. Клинические признаки заболевания у взрослых коров отсутствуют, хотя вирус может находиться в их организме на протяжении всей жизни. Неоспороз вызывает аборты, как единичные, так и массовые, на любом месяце стельности. В ряде случаев отмечают: преждевременные роды (обычно такие телята нежизнеспособны), эмбриональную смертность (коровы снова приходят в охоту), мумификацию плода (обычно на 3-5 мес. стельности).

    Основной путь передачи – вертикальный или транс-плацентарный, и по статистике на него приходится до 90% всех случаев заражения скота неоспорой. Хотя регистрируются случаи передачи заболевания через сперму, полученную от серопозитивных быков-производителей.

    Горизонтальный путь передачи неоспоры многоэтапный, где собака является дефинитивным хозяином, а корова лишь промежуточным. У собак клинические признаки неоспороза проявляются редко и, как правило, включают диарею, а также нервные расстройства. Ооцисты, содержащиеся в кале собак, сохраняют жизнеспособность в течение длительного времени. Контаминация скота ооцистами происходит через почву на пастбище, воду и корма (как правило, зеленую массу и силос). Цикл замыкается, если собаки поедают последы и абортировавшие плоды от серопозитивных коров.

    Методы лечения не разработаны, потому все серопозитивные телки должны как можно раньше удаляться из стада. В связи с этим, необходимо параллельно проводить профилактические мероприятия и регулярную диагностику.

    Например, нидерландским фермерам рекомендуют не заводить собак на фермах, но и всячески препятствовать проникновению их извне.

    Для иммунологических исследований берут кровь у телят первых дней жизни или телок старше 6 мес. Гистологическим исследованиям подвергают мозг, печень и сердце абортированных плодов. Производится проверка всего сборного молока: отрицательный тест указывает на то, что в стаде не более 15% лактирующих коров заражены неоспорой; положительный тест – серопозитивных коров в стаде более 15%.

    В Нидерландах действует добровольная программа, в рамках которой фермерам предлагается абсолютно бесплатно тестировать 3 раза в год все сборное молоко и проводить анализ крови абортировавших коров.

    По материалам семинара, организованного ККЗ Кирова 22 ноября 2012 года

    Таблица 2. Диагностика и меры по предотвращению распространения Neospora caninum в стаде

    Результаты теста сборного молока Аборты Серологические анализы абортировавших коров Рекомендации
    Негативный Нет Проверка купленного скота
    Негативный Есть Позитивные Проверка «родственников» серопозитивных коров
    Позитивный Нет Проверка репрезентативной выборки стада
    Позитивный Есть ≥ 60% Проверка всего поголовья

    Вакцинация

    Современные программы вакцинации направлены не только на обеспечение высокого уровня защиты матери от клинических заболеваний, но, что особенно важно, на защиту от виремии и предотвращение образования ИП.[28] В то время как задействованные иммунные механизмы одинаковы, уровень иммунной защиты, необходимый для защиты плода, намного выше, чем для предотвращения клинического заболевания.[29]

    Хотя исследования с контрольным заражением показывают, что как убитые, так и живые вакцины предотвращают инфицирование плода в экспериментальных условиях, эффективность вакцин в полевых условиях подвергается сомнению.[30] Рождение ИП-телят в вакцинированных стадах предполагает, что убитые вакцины не выдерживают испытания, вызванного вирусной нагрузкой, выделяемой ИП в полевых условиях.[31]

    Искоренение и борьба

    Основа искоренения — выявление и удаление устойчиво инфицированных животных. Затем повторное заражение предотвращается вакцинацией и высокими уровнями биобезопасности, поддерживаемыми постоянным наблюдением. ИП действуют как вирусные резервуары и являются основным источником вирусной инфекции, но временно инфицированные животные и зараженные фомиты также играют значительную роль в передаче.[1]

    Почти 20 лет назад лидерами в искоренении BVD были скандинавские страны. Несмотря на различные условия в начале проектов с точки зрения юридической поддержки и независимо от первоначальной распространенности стад с животными ИП, всем странам потребовалось примерно 10 лет, чтобы достичь своей финальной стадии.[25][26]

    После того, как было доказано, что искоренение BVD может быть достигнуто экономически эффективным способом, в Европе последовал ряд региональных программ, некоторые из которых были преобразованы в национальные схемы.[27]

    Вакцинация — важная часть как борьбы, так и искоренения. В то время как вирус BVD все еще циркулирует в национальном стаде, племенной крупный рогатый скот подвержен риску рождения новорожденных с PI, и экономические последствия BVD все еще актуальны. Когда будет достигнута ликвидация, невакцинированные животные будут представлять наивное и восприимчивое стадо. Заражение от импортированных животных или зараженных фомитов, занесенных на ферму, или через временно инфицированные контактные лица будет иметь разрушительные последствия.

    Рекомендации

    1. ^ абcd
      Fray; и другие. (2000).
      Влияние вируса вирусной диареи крупного рогатого скота на воспроизводство крупного рогатого скота в связи с борьбой с болезнями
      . Наука о репродукции животных 60–61, 615–627.
    2. Рихтер, В; Лебль, К; Баумгартнер, Вт; Обрицхаузер, Вт; Käsbohrer, A; Пиниор, B (2017). «Систематический всемирный обзор прямых денежных потерь из-за инфекции вирусом диареи крупного рогатого скота». Ветеринарный журнал
      .
      220
      : 80–87. Дои:10.1016 / j.tvjl.2017.01.005. PMID 28190502.
    3. Пиньор, В; Ферт, C; Рихтер, В; Лебль, К; Trauffler, M; Dzieciol, M; Хаттер, S; Burgstaller, J; Обрицхаузер, Вт; Зима, П; Кесборер, А (2017). «Систематический обзор финансовых и экономических оценок деятельности по предотвращению и смягчению последствий вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) во всем мире». Профилактическая ветеринария
      .
      137
      (Pt A): 77–92. Дои:10.1016 / j.prevetmed.2016.12.014. PMID 28040270.
    4. Schaut, Роберт Дж .; McGill, Jodi L .; Нил, Джон Д .; Ридпат, Джулия Ф .; Сакко, Рэнди Э. (02.10.2015). «Инфекция вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота типа 2 in vivo модулирует реакцию TLR4 в дифференцированных миелоидных клетках, которая связана со снижением экспрессии MyD88». Вирусные исследования
      .
      208
      : 44–55. Дои:10.1016 / j.virusres.2015.05.017. ISSN 1872-7492. PMID 26043978.
    5. ^ абc
      Ланьон; и другие. (2014).
      Вирусная диарея крупного рогатого скота: патогенез и диагностика
      . Ветеринарный журнал.
    6. Женихи (2004). Репродуктивные последствия заражения вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота
      . Ветеринарные клиники Северной Америки: практика пищевых животных.
    7. Scharnböck, B; Рох, Франц-Фердинанд; Рихтер, В; Funke, C; Ферт, C; Обрицхаузер, Вт; Баумгартнер, Вт; Käsbohrer, A; Пиниор, B (2018). «Мета-анализ распространенности вируса вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV) в мировой популяции крупного рогатого скота». Научные отчеты
      .
      8
      (1): 14420. Bibcode:2018НатСР … 814420С. Дои:10.1038 / s41598-018-32831-2. ЧВК 6158279. PMID 30258185.
    8. Хорнберг; и другие. (2009). Генетическое разнообразие изолятов пестивирусов крупного рогатого скота из Западной Австрии
      . Ветеринарная микробиология 135 (3–4), 205–213.
    9. ^ аб
      Феннер (2011).
      Ветеринарная вирусология Феннерс
      . Elsevier, 4-е издание.
    10. Линденбах и Райс (2001). Flaviviridae: вирусы и их репликация
      . Области вирусологии.
    11. Ким М.Дж., Као С. Факторы, регулирующие переключение матрицы in vitro вирусными РНК-зависимыми РНК-полимеразами: последствия для рекомбинации РНК-РНК. Proc Natl Acad Sci U S. A. 2001, 24 апреля; 98 (9): 4972-7. DOI: 10.1073 / pnas.081077198. Epub 2001, 17 апреля. PMID: 11309487; PMCID: PMC33148
    12. Ридпат; и другие. (1994). Разделение вируса вирусной диареи крупного рогатого скота на генотипы
      . Вирусология 205 (1), 66–74.
    13. Петерханс; и другие. (2010). Цитопатические вирусы вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV): новые пестивирусы, обреченные на вымирание
      . Ветеринарные исследования 41:44.
    14. Гиллеспи; и другие. (1962). Клеточная резистентность в культуре ткани, индуцированная нецитопатогенными штаммами, к цитопатогенному штамму вируса диареи вируса крупного рогатого скота
      . Труды Общества экспериментальной биологии и медицины 110, 248–250.
    15. Ци; и другие. (1998). Вставка гена SMT3B крупного рогатого скота в NS4B и дупликация NS3 в геном вируса вирусной диареи крупного рогатого скота коррелируют с цитопатогенностью вируса
      . Исследование вирусов 57 (1), 1–9.
    16. ^ аб
      Менниг; и другие. (2005).
      BVD Control в Европе: текущее состояние и перспективы
      . Обзоры исследований здоровья животных 6 (1): 63–74.
    17. Анон (2005). Тематическая сеть ЕС по борьбе с вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота (BVDV)
      . Документ с изложением позиции.
    18. Вольфмейер; и другие. (1997). Геномные (50-UTR) и серологические различия между немецкими полевыми изолятами BVDV
      . Arch. Virol. 142, 2049–2057.
    19. Браунли; и другие. (1987). Патогенез и эпидемиология вирусной диареи крупного рогатого скота вирусной инфекции крупного рогатого скота
      . Annales de Recherches Veterinaires 18 (2), 157–166.
    20. Fray; и другие. (1998). Длительное выделение из носа и виремия цитопатогенного вируса диареи крупного рогатого скота при экспериментальном заболевании слизистой оболочки с поздним началом
      . Ветеринарные исследования 143 (22): 608–11.
    21. Гнаться; и другие. (2004). Иммунный ответ на вирус вирусной диареи крупного рогатого скота: постоянно меняющаяся картина
      . Ветеринарные клиники Северной Америки, занимающиеся производством пищевых животных, 20 (1): 95–114.
    22. Фогес (2006). Прямые побочные эффекты стойкой инфекции BVDV у молочных телок — ретроспективное исследование случай-контроль
      . VetScript.19: 22–25.
    23. Менниг и Лисс (1995). Патогенез внутриутробных инфекций, вызванных вирусом вирусной диареи крупного рогатого скота
      . Вет. Clin. Food Anim. 11: 477–488.
    24. Браунли; и другие. (1984). Экспериментальное производство смертельных заболеваний слизистой оболочки крупного рогатого скота
      . Vet Rec 114 (22): 535–536.
    25. Халт и Линдберг (2005) Prev Vet Med 72: 143–148
    26. Rikula et al. (2005) Prev Vet Med 72: 139–142
    27. Rossmanith et al. (2005) Prev Vet Med 72: 133–137
    28. Шталь и Алениус (2012) Японский журнал ветеринарных исследований 60 (Приложение) S31–39.
    29. Ридпат (2013) Biologicals 41: 14–19.
    30. О’Рурк (2002) Журнал Американской ветеринарной медицинской ассоциации 220 (12): 1770–1772
    31. Graham et al. (2004) Revista Portuguesa de ciencias veterinarias 127: 38.
    • Вирус вирусной диареи крупного рогатого скота, рассмотрен экспертами и опубликован Wikivet на https://en.wikivet.net/Bovine_Viral_Diarrhoea_Virus, дата обращения 21.07.2011.
    Рейтинг
    ( 2 оценки, среднее 4.5 из 5 )
    Понравилась статья? Поделиться с друзьями: